一般情況下，細胞培養(yǎng)是把傳代好的細胞放入培養(yǎng)瓶或培養(yǎng)皿中，然后把培養(yǎng)瓶或培養(yǎng)皿放入設置好溫度和二氧化碳體積分數(shù)的培養(yǎng)箱中進行培養(yǎng)．由于細胞在代謝過程中需要消耗氧氣，有氧氣交換過程，因此培養(yǎng)瓶或培養(yǎng)皿的蓋子不能擰緊．在培養(yǎng)液中氧的體積分數(shù)和空氣中的氧的體積分數(shù)處于平衡狀態(tài)下，細胞的生存、繁殖、變異會受培養(yǎng)液中的氧分壓的影響．在平衡態(tài)下，氣相中氧氣的體積分數(shù)２１％對應液相中氧分壓２１ｋＰａ．然而，在實際的細胞培養(yǎng)中，培養(yǎng)液中的氧分壓盡管接近２１ｋＰａ，但是也要受到２個因素的影響：其一是媒質給細胞的供氧能力；其二是細胞的耗氧能力．通常情況下，在培養(yǎng)細胞時，不會考慮培養(yǎng)液中的氧分壓，因為，在培養(yǎng)過程中會給細胞提供足夠的氧．但是，在某些情況下，比如活體干細胞的培養(yǎng)和移植過程中，干細胞的生長對氧分壓非常敏感，２００８年Ｓｉｍｏｎ　ａｎｄ　Ｋｅｉｔｈ以及Ｌｉｎ等研究表明，干細胞適于在低氧分壓環(huán)境下生存．在低氧環(huán)境下，通過改變氧分壓的值，可以修改干細胞的外型．因此，一些研究者認為，細胞周圍的氧分壓是能夠反映細胞的功能狀態(tài)（包括細胞分化、生長、線粒體的能量代謝）的重要因素之一．因此，對細胞培養(yǎng)過程中的氧分壓進行監(jiān)測具有重要的意義．

活體外的氧分壓監(jiān)測的標準方法為Ｃｌａｒｋｅｔｙｐｅ電極法：電極法的傳感器由電解液以及處于其中的陰極和陽極組成，電解液由外層能夠滲透氧氣的膜包圍．當氧氣通過薄膜和電解液擴散到達陰極時，陰極附近的氫氧根離子會減少．陰極提供電子給氧分子，同時在陰極和陽極間的電流與樣品的氧分壓成正比．由于電極本身消耗氧氣，因此電極法測得的氧分壓值將低于實際值．在Ｐｅｔｔｅｒｓｅｎ等的研究中，用微電極監(jiān)測靜態(tài)條件下的細胞培養(yǎng)的氧分壓，測量發(fā)現(xiàn)細胞周圍的氧含量和環(huán)境空氣中的氧含量有顯著差別．另一方法是使用氧敏感的熒光體溶解在介質中測量氧分壓，但是敏感的熒光團可能對細胞有毒性．以上傳感方法存在缺點（如費用高、有限的使用壽命、響應時間長等），不適合持續(xù)監(jiān)測細胞培養(yǎng)過程中的氧分壓變化．因為電化學傳感器本身消耗氧氣，再者溶氧敏感熒光團的組織培養(yǎng)需要遠離培養(yǎng)箱才能讀取有用的信息．為了克服這些缺點，基于熒光淬滅的氧傳感器為測量活體外氧分壓提供了另一種選擇．有研究報道，把柔性的傳感器放到細胞培養(yǎng)瓶中監(jiān)測氧分壓值，但是大體積的光學系統(tǒng)很難放入傳統(tǒng)的細胞培養(yǎng)箱中．

本文介紹將光纖氧氣傳感器用于監(jiān)測培養(yǎng)液中細胞的氧分壓的實驗方法．以presens的熒光傳感材料，作為氧傳感發(fā)光材料，以聚乙烯（甲基丙烯酸乙酯，ＰＥＭＡ）作為基體固定發(fā)光體．把氧傳感發(fā)光材料涂覆在圓柱形光纖的拋光面上，光纖后端有光纖分接頭，可以與ＬＥＤ激發(fā)光源和計算機處理系統(tǒng)相連，這樣就組成了基于光纖氧傳感器的細胞培養(yǎng)氧分壓的監(jiān)測系統(tǒng)．該系統(tǒng)可以測量液相中的氧分壓變化，實驗結果表明：細胞密度越高，處于空氣環(huán)境的培養(yǎng)液中的氧分壓越低．

以ＰＫ－１５細胞為實驗樣品，對細胞周圍的氧分壓值進行了測試．實驗結果表明：隨著細胞密度的增高，測得的氧分壓的數(shù)據(jù)越小．通過與細胞計數(shù)的結果進行對比，也實驗證明了光纖氧氣傳感器能夠對培養(yǎng)液中細胞周圍的氧分壓進行監(jiān)測，細胞培養(yǎng)中液相中的氧分壓水平不僅依賴于細胞培養(yǎng)環(huán)境氣相中的氧分壓，而且也依賴于細胞的密度和細胞代謝．因此在細胞培養(yǎng)過程中需要監(jiān)視和控制氧分壓水平，以維持在一般生理條件下的細胞培養(yǎng)，并且使實驗條件具有可復制性和可比性．

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