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ATCC細(xì)胞
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腫瘤細(xì)胞的取材

時間:2015-7-14閱讀:1602
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腫瘤細(xì)胞的取材和培養(yǎng) 

(一)腫瘤細(xì)胞的取材方法:培養(yǎng)腫瘤細(xì)胞的材料一般來自患者,對實體瘤患者可取原發(fā)腫瘤組織或轉(zhuǎn)移灶,有胸、腹水患者可取胸水或腹水,白血病患者可取血液或骨髓液進(jìn)行培養(yǎng)。

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實體瘤取材方法:取術(shù)后或活檢標(biāo)本,要盡早浸入無血清培養(yǎng)液保鮮,盡快進(jìn)行培養(yǎng)。盡可能去除潰瘍及壞死組織,避免細(xì)菌、霉菌污染,對取自外露的腫瘤組織,應(yīng)在培養(yǎng)前在含二性霉素B 2μg/mL,青霉素200~1000u/mL,鏈霉素500μg/mL的培養(yǎng)液中浸泡10~20分鐘,再用洗液反復(fù)沖洗干凈后,再作培養(yǎng)。  

體腔液的取材方法:在無菌條件下采取體腔液(胸水或腹水),不需加抗凝劑,可直接以1200r/min收集細(xì)胞,不要久置,也不要在冰中冷卻,而應(yīng)盡早接種。  

血液(骨髓)取材法:白血病患者可取血液或骨髓,主要以取外周血為研究對象,用肝素抗凝的注射器無菌抽取5~10mL外周血,置于試管中立刻分離培養(yǎng)。


腫瘤細(xì)胞的培養(yǎng)方法:腫瘤細(xì)胞對培養(yǎng)基要求不如正常細(xì)胞嚴(yán)格,一般常用RPM1640,DMEM、Mc-Coy-等培養(yǎng)基,血清濃度不高,10%即可,建議在原代培養(yǎng)時能加入生長因子或原患者血清(1%~2%)以利細(xì)胞生長,培養(yǎng)方法很多,主要有組織塊法、酶消化法、鉭網(wǎng)法、脫落細(xì)胞法等。

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小鼠樹突狀細(xì)胞肉瘤瘤株,DCS細(xì)胞

原代細(xì)胞的培養(yǎng)方法如下:
組織塊培養(yǎng)法:將取得的瘤組織去除脂肪\結(jié)締組織及壞死部分,在平皿中用Hanks液洗3次,剪碎組織,切成1~2mm3小塊,接種于事先涂有鼠尾膠原的培養(yǎng)瓶(或皿)中,37℃ 5%或加蓋瓶塞在普通恒溫箱中培養(yǎng)。 

酶消化法:在上述的碎組織塊中加入0.25%胰蛋白酶或(2000u/ml膠原酶)在37℃水浴中消化30分鐘(或更長一些),去除消化液,用洗液洗3次,培養(yǎng)液洗1次后,用*培養(yǎng)基懸浮,并用吸管吹打分散制成細(xì)胞懸液,計數(shù)。以5×108 ~10×108 /L細(xì)胞濃度,在含有10%小牛血清的RPMI1640(或Eagle MEM或DMEM)中37℃ 5% CO2下分瓶(或皿)培養(yǎng)。

小鼠肺成纖維細(xì)胞,WML2細(xì)胞
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小鼠正常肝細(xì)胞,NCTC 1469細(xì)胞

鉭網(wǎng)培養(yǎng)法:在一張面積約為1cm2 的鉭網(wǎng)上放入上述剪碎的一塊或幾塊腫瘤組織塊(1~2mm3 大小),用鑷子輕壓,使其粘于網(wǎng)上,再把鉭網(wǎng)放入培養(yǎng)皿中,使網(wǎng)下的組織塊與皿壁緊緊接觸,于37℃ 5% CO2下培養(yǎng),每隔2~3天換液一次,5天后可見有上皮細(xì)胞從網(wǎng)上移出,并能在相當(dāng)于腫瘤組織部位形成純凈的單層上皮細(xì)胞。  

脫落細(xì)胞法:將新鮮的腫瘤組織去除脂肪和結(jié)締組織,洗液洗2次后,用刀片將腫瘤組織切成細(xì)薄片,在切割的同時有許多上皮細(xì)胞脫落下來,脫落細(xì)胞經(jīng)洗滌后,加入*培養(yǎng)基,便可獲得較純的上層細(xì)胞,于培養(yǎng)瓶(或皿)中、37℃ 5% CO2下培養(yǎng),每隔2~3天換液,7~10天上皮細(xì)胞逐漸長成單層。

在原代培養(yǎng)中,常在培養(yǎng)物中混有正常成纖維細(xì)胞,若把正常細(xì)胞誤認(rèn)為是癌細(xì)胞,就會使整個工作失去意義,若不及時去除這些成纖維細(xì)胞,由于它比腫瘤細(xì)胞生長快,zui終能抑制腫瘤細(xì)胞的生長。因此,盡早排除成纖維細(xì)胞,已成為腫瘤細(xì)胞長期培養(yǎng)建系的關(guān)鍵,現(xiàn)已發(fā)現(xiàn)有許多因素能抑制成纖維細(xì)胞生長

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