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真核細(xì)胞基因的轉(zhuǎn)染方法

時間:2017-7-10閱讀:604
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【1】.DEAE-葡聚糖法
一、實驗材料:
1.50mg/ml DEAE-葡聚糖溶液(500mg DEAE-葡聚糖溶于10ml水,1ml分裝,高壓滅菌,儲存于-20℃) (Sigma)
2.TBS溶液(PH 7.4)
NaCL 8.0g/L
KCL 0.2g/L
Tris 3.0g/L
酚紅 0.015g/L
(HCL調(diào)PH至7.4,定容1L。高壓滅菌。)
3.20%葡萄糖溶液(高壓滅菌,-20℃儲存)
4.PBS (PH 7.4)
二、實驗方法:
1.配置TBS-D溶液
100mlTBS加入20%葡萄糖溶液0.5ml,至終濃度為1%。
2.配置DEAE-dextran-DNA-TBS-D轉(zhuǎn)染液
DEAE-dextran 1mg/ml
DNA(超螺旋) 5-10ug/ml(DNA濃度根據(jù)細(xì)胞種類、細(xì)胞密度及質(zhì)粒種類決定,zui適濃度經(jīng)預(yù)實驗確定)
轉(zhuǎn)染液數(shù)量根據(jù)細(xì)胞多少決定,一般每瓶細(xì)胞需300ul。
3.以5×105/瓶密度接種細(xì)胞,培養(yǎng)24小時。
4.細(xì)胞棄培養(yǎng)基, PBS 5ml洗兩遍, TBS-D洗一遍,吸盡殘液。
5.加入轉(zhuǎn)染液,搖動培養(yǎng)瓶,使其與細(xì)胞充分接觸,放入孵箱溫育20-40分鐘,觀察細(xì)胞至皺縮變圓為止。
6.吸去轉(zhuǎn)染液,TBS-D洗兩遍, PBS洗一遍(動作必須輕柔,避免已轉(zhuǎn)染DNA的細(xì)胞脫落),加入10ml全培養(yǎng)基 3%CO2濃度37℃培養(yǎng)。
三.實驗結(jié)果鑒定標(biāo)準(zhǔn):
1.轉(zhuǎn)染有DNA的細(xì)胞一般鏡下觀察顆粒較多,加入抗生素篩選培養(yǎng),可使未轉(zhuǎn)染DNA的細(xì)胞死亡。
2.如目的DNA為pZ189,可通過Hirt’s法提取,做轉(zhuǎn)化鑒定。
3.加入氯喹作用或進(jìn)行甘油休克可增加轉(zhuǎn)染效率。
四.參考文獻(xiàn):
1.Sambrook J et al. Molecular cloning.
2.張小山,浙江醫(yī)科大學(xué)研究生學(xué)位論文。

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