細胞克隆，是將一個單細胞從細胞群中分離出來單獨培養，使之重新繁衍成一個新的單一細胞群的培養技術。未經克隆化的細胞具有異質性，經過克隆得到的是均一細胞集團。這里僅介紹T細胞與NK 細胞的克隆方法。

基本原理
用限度稀釋克隆形成法制備T 細胞克隆時，并非依賴細胞 的特性，而是將T 細胞在細胞培養板上稀釋到統計學的濃度，即從理論值上達到每孔1 個細胞，其中加入IL－2 和PHA 可增強細胞的生長，而加入的同種異體PBMC 作為飼養細胞，在這種體系中，單個T 細胞可增殖生長成細胞集團，即T 細胞克隆。

試劑和材料
●提純T 細胞（參見*章之第六節）
● 飼養細胞（以50GYγ射線照射）：從兩個不同供者獲得的同種異體PBMC從理論上認為兩者的每一演變均不同。
● 培養基：RPMI1640 培養液（RPMI1640 液＋1mmol/L 丙酮酸鈉＋2mmol/L 谷氨酰胺＋100u/ml青霉素和100μg/ml 鏈霉素）再加入熱滅活的10％的AB 型血清。
● 按說明書所述，將PHA－A 溶于雙蒸水中。
● 含有104u/ml hrIL－2 的PBS 液中加入1％牛血清白蛋白（BSA）。
● 器皿、儀器：96 孔U 型低細胞培養板及24 孔細胞培養板，垂直氣流超凈臺，CO2 孵箱，倒置顯微鏡等。

實驗操作
1.培養板的準備
T 細胞克隆的制備1） 應用典型的有限稀釋克
隆形成法，以0．5 個/孔、1 個/孔、5 個/孔等三種不同細胞濃度準備三塊96 孔U 型培養板，以及半塊
為10 個/孔濃度的96 孔培養板。
2） 準備含有5×105/ml 飼養細胞（經γ射線照射）的RPMI1640培養液，并加入20u/ml 的IL－2 和1μg/ml PHA－A。
3） 在3 塊半96 孔板上，每孔均加入100μl 飼養細胞（50000個）。
4） 準備稀釋T 細胞的培養（圖2－3）
5） 如圖2－3 所示，準備3 支15ml 試管，內含5ml 細胞培養液（CM）加20u/ml IL－2，將4 支試管分別稀釋并接種96 孔板，步驟如下：
（1） 第1 管加50μl 稀釋液C，相當50 個細胞，混勻后加在96 孔板上，50μl/孔，此板為0．5 細胞/孔。
（2） 第2 管加100μl 稀釋液C，相當100 個細胞，混勻后加在96 孔板上，50μl/孔，此板為1 細胞/孔。
（3） 第3、4 管各加500μl 稀釋液C，相當500 個細胞，第3 管為500 細胞/5mlCM,，混勻后加在96 孔板上，50μl/孔，此板為5 細胞/孔; 第4 管為500 細胞/2．5mlCM,，混勻后僅夠加半個板，50μl/孔，此板為10 個細胞/孔。
4 塊96 孔板上有50μl 不同濃度T 細胞懸液加到含有100μl 飼養細胞的各孔中（IL－2 的終濃度應為20u/ml）。
T 細胞克隆的制備2.T細胞克隆培養
1） 如圖2－4 所示，每隔2－3 天吸棄50μl培養上清液，加入50μl 含有IL－2 的新鮮培養液，使其終濃度達20u/ml；每隔10－15 天吸棄50μl 培養上清液，加入50μl 含有新鮮飼養細胞（50000/孔）、IL－2（終濃度達20u/ml）和PHA－A（終濃度達1μg/ml）的培養液。2） 經21－25 天后出現克隆細胞生長孔，首先在10 細胞/孔的板上出現，當在1 細胞/孔的板上出現克隆生長時，即可將5 細胞/孔和10 細胞/孔的兩塊板丟棄。
3） 當0．5 細胞/孔和1 細胞/孔兩板上長出的細胞克隆變大時，將該孔的100μl 培養液懸浮混勻，分裝于96 孔板2 個孔內，50μl/孔，而且每孔已預先加有上述飼養細胞（50000/孔）。
4） 隨著細胞的繼續生長，用同法可將同一克隆細胞分裝擴充為4 孔，當分裝成8 孔時，可匯總這8 孔的細胞轉移至24 孔板的1 孔內。
5） T 細胞克隆可在如此條件下維持其生長，即每隔2－3 天更換含有IL－2（20u/ml）的新鮮培養液，每隔10－15 天更換含有新鮮飼養細胞、IL－2（20u/ml）和PHA（1μg/ml）的培養液，其中加入飼養細胞的比率應為T 細胞克隆細胞數0．5－1×106 細胞需106 飼養細胞。

質控與提示
1.細胞克隆的性能可用抗TCRVβ片段的抗體在流式細胞儀上進行檢測，或用分子生物學方法（如RT－PCR）去檢測TCR－Vβ轉錄產物。
2.在一檢出陽性克隆時就開始進行亞克隆。
3.某些T 淋巴細胞亞群不能在這一系統（如飼養細胞＋PHA 環境）中增殖，但此系統對獲得克隆的總體要比接種細胞的數量更為有效。
4.必須使飼養細胞受到充分照射，以保證長出的細胞是T 細胞克隆，而不是飼養細胞。
（可用流式細胞儀、分子生物學方法或HLA 分型等檢測）。